ESTABLECIMIENTO DE SUSPENSIONES CELULARES A PARTIR DE SEGMENTOS FOLIARES DE VALERIANA PYRAMIDALIS KUNTH
Barra lateral del artículo
Publicado:
ago 30, 2015
Palabras clave:
Callogénesis; 2,4-D; suspensiones celulares; Valeriana pyramidalis; Calli; cells suspensions cultures; 2, 4-D; Valeriana pyramidalis
Contenido principal del artículo
Resumen
Valeriana pyramidalis Kunth, es una planta nativa, popularmente utilizada por su actividad calmante en el tratamiento de problemas nerviosos y cardíacos, además de enfermedades y trastornos como migraña e insomnio. En la presente investigación se planteó el establecimiento de suspensiones celulares de V. pyramidalis Kunth, como un estudio base para una futura cuantificación de sus metabolitos secundarios. Tras estandarizar un protocolo de desinfección y obtener callos friables, se establecieron suspensiones celulares y se obtuvo con éxito las curvas de crecimiento celular.
Descargas
La descarga de datos todavía no está disponible.
Detalles del artículo
Cómo citar
1.
Evelyn Carrera, Cristian Peña, Mónica Jadán. ESTABLECIMIENTO DE SUSPENSIONES CELULARES A PARTIR DE SEGMENTOS FOLIARES DE VALERIANA PYRAMIDALIS KUNTH. EEC [Internet]. 30 de agosto de 2015 [citado 22 de diciembre de 2024];2(1). Disponible en: https://revistaecuadorescalidad.agrocalidad.gob.ec/revistaecuadorescalidad/index.php/revista/article/view/7
Sección
Artículos Científicos
Citas
C. Bell (2003) “Systematics of Valerianaceae”. Obtenido de http://phylodiversity.net/cbell/Valerianaceae.html
C. Rúales& E. Guevara (2010) “La flora patrimonial de Quito descubierta por la expedición de Humboldt y Bonpland en el año 1802”. Avances. 2(3), B54-B63.
T. Jaramillo (2013) “Plantas Nativas de la Hoya de Quito”. (J. B. Quito, Ed.) Quito, Ecuador: Fundación Botánica de los Andes.
A. Cavender, & M. Albán (2009) “The use of magical plants by curanderos in the Ecuador highlands”. Journal of Ethnobiology and Ethnomedicine, 3. Web. 5.
L. Salles, A. Silva, A. Fett-Neto, G. von Poser, & S. Rech (2002) “Valeriana glechomifolia: in vitro propagation and production of valepotriates”. Plant Sci. 163, 165–168.
J. Garrido (2007) “Análisis por cromatografía líquida de alta resolución de ácido valérico o sus derivados en extracto de hojas y raíz de valeriana (Valeriana Prionophylla Stand)”Tesis de grado; F. de Farmacia. Guatemala: Universidad de San Carlos de Guatemala.
N. Maurmann, D. Russowski, S.Rech, &A. Fett-Neto (2006) “Role of light and medium composition on growth and Valepotriates contents in Valeriana glechomifolia whole plant liquid cultures”. Plant Cell, Tissue and Organ Culture, 86(2), 211-218.
F. Zurita (2014) “Conteo cromosómico de la especie Polylepis incana en tres poblaciones del Ecuador (El Inga, Papallacta, El Ángel) a partir de meristemos radicales”. Tesis Ing. en Biotecnología. Universidad de las Fuerzas Armadas.ESPE Sangolquí, Ecuador.
M. Criollo (2013). Propagación in vitro de genotipos seleccionados de tomate de árbol (Solanum Betaceum Cav.) a partir de meristemos, utilizando un sistema de inmersión temporal. Tesis Ing. en Biotecnología. Universidad de las Fuerzas Armadas ESPE. Sangolquí, Ecuador.
M, Arteaga (2012). “Efecto del BAP y 2,4-D en la inducción in vitro de tejido callogénico a partir de láminas foliares, segmentos peciolares y vitroexplantes hipocotiledonares y radiculares de Moringa
oleífera”. Tesis de grado. Departamento de ciencia y producción agropecuaria Ing. Agronómica. Universidad Zamorano. Honduras.
T. Murashige &F.Skoog, (1962) “A revised medium for rapid growht and bioassays with tobacco tissue cultures”.Physologia Plantarum. 15:473-497
P. Freire (2013) “Establecimiento de suspensiones celulares de Chenopodium ambrosioides para una futura obtención de metabolitos secundarios, empleando la citoquinina thidiazuron (TDZ)”. Tesis Ing.en Biotecnología. Universidad de las Fuerzas Armadas. ESPE. Sangolquí, Ecuador.
S. Bhojwani& M. Razdan (1996) “Plant tissue culture: Theory and Practice”, a Revised Edition.
Amsterdam. Elsevier. 467.
CESVBC (2014) “Manual técnico de desinfección poscosecha”. Obtenido de: http://www.lenntech.es/procesos/desinfeccion/quimica/desinfectantes-hipoclorito-de-sodio.htm.
F. Dolberg (2006) PROQUIMSA S.A. Obtenido de Hoja de Seguridad de Materiales:
http://www.proquimsaec.com/images/hoja_seguridad/HS_33_HIPOCLORITO_DE_SODIO.pdf.
W. Roca& L. Mroginski (1993) “Cultivo de Tejidos en la Agricultura: Fundamentos y aplicaciones”. (W. M. Roca, Ed.) Cali, Colombia: Centro Internacional de Agricultura Tropical. 969.
F. Bronsema, P Redig, H. Van Oosteven, & A Van Onckelen (1996) “Uptake and biochemical analysis of 2, 4-D in culturcd cigotic embryos of. Zea mays L”. Plant Physiol. (149), 3. 363-371.
A. Lorente (2012) “Evaluación del cultivo in vitro de variedades de vid cultivadas en la DOCA Rioja”. Proyecto Fin de Carrera. Universidad de la Rioja. España.
A. Zebarjadi, S. Najafi, H. Ghasempour, &D. Motamedi (2011) “Establishment of a practical tissue
culture for producing hairy roots of Valeriana officinalis L. vía Agrobacterium rhizogenes”. Journal of Medicinal Plants Research, 5(20), 4985-4990.
J. Mathur, Singh, & P.Ahuja (1991) “Plant regeneration from callus cultures of Valeriana Wallichii
DC”. Plant Cell Rep., 9. (9), 523-526.
A. Esquivel, &J. Escalant (1994) “Conceptos Básicos Del Cultivo de Tejidos Vegetales”. Turibalba, Costa Rica: OrtonIICA / CATI.
J. Pérez (2010) “Evaluación de la producción de fotoquímicos a partir de cultivo de células en la
suspensión de Neriumoleander”. Tesis de Maestría. Universidad Nacional de Colombia. Medellín. Colombia.
R. Mustafa, W. Winter, F. Van Iren, & R. Verpoorte (2011) “Initiation, growth and cryopreservation of plant cell suspension cultures”. Nature Protocols, 6. 715-720.
M. Villalobos & E.García (2012) “Características marcadoras en suspensiones celulares embriogénicas de banano cien BTA-03(AAAA) y su parental Williams (AAA)”. Bioagro. 24(2), 73-82.
G. Trejo & M. Rodríguez (2007) “La agregación celular en la producción de metabolitos secundarios en cultivos vegetales in vitro”. Interciencia. 32(10), 671-675.
A. Hulst, T. Meyer, H. Breteler, J. Tramper (1981) “Effect of aggregate size in cell cultures of Tagetespatula on thiophene production and cell growth”. Appl. Microbiol. Biotechnol.30, (1). 18-25.
J. Schlatmann, J. Vinke, H. Hoopen, J. Heijnen (1995) “Relation between dissolved oxygen
concentration and amalicine production rate in high density cultures of Catharanthus roseus”.Biotechnol. Bioeng, 45(5), 435-439.
G. Montiel, C. Breton, M. Thiersault, V. Burlat, C. Jay-Allemand, P. Gantet (2007) “Transcription factor Agamous-like 12 from Arabidopsis promotes tissue-like organization and alkaloid biosynthesis in Catharanthus roseus suspension cells”. Metab.Eng. 9. (2). 125-132.
C. Rúales& E. Guevara (2010) “La flora patrimonial de Quito descubierta por la expedición de Humboldt y Bonpland en el año 1802”. Avances. 2(3), B54-B63.
T. Jaramillo (2013) “Plantas Nativas de la Hoya de Quito”. (J. B. Quito, Ed.) Quito, Ecuador: Fundación Botánica de los Andes.
A. Cavender, & M. Albán (2009) “The use of magical plants by curanderos in the Ecuador highlands”. Journal of Ethnobiology and Ethnomedicine, 3. Web. 5.
L. Salles, A. Silva, A. Fett-Neto, G. von Poser, & S. Rech (2002) “Valeriana glechomifolia: in vitro propagation and production of valepotriates”. Plant Sci. 163, 165–168.
J. Garrido (2007) “Análisis por cromatografía líquida de alta resolución de ácido valérico o sus derivados en extracto de hojas y raíz de valeriana (Valeriana Prionophylla Stand)”Tesis de grado; F. de Farmacia. Guatemala: Universidad de San Carlos de Guatemala.
N. Maurmann, D. Russowski, S.Rech, &A. Fett-Neto (2006) “Role of light and medium composition on growth and Valepotriates contents in Valeriana glechomifolia whole plant liquid cultures”. Plant Cell, Tissue and Organ Culture, 86(2), 211-218.
F. Zurita (2014) “Conteo cromosómico de la especie Polylepis incana en tres poblaciones del Ecuador (El Inga, Papallacta, El Ángel) a partir de meristemos radicales”. Tesis Ing. en Biotecnología. Universidad de las Fuerzas Armadas.ESPE Sangolquí, Ecuador.
M. Criollo (2013). Propagación in vitro de genotipos seleccionados de tomate de árbol (Solanum Betaceum Cav.) a partir de meristemos, utilizando un sistema de inmersión temporal. Tesis Ing. en Biotecnología. Universidad de las Fuerzas Armadas ESPE. Sangolquí, Ecuador.
M, Arteaga (2012). “Efecto del BAP y 2,4-D en la inducción in vitro de tejido callogénico a partir de láminas foliares, segmentos peciolares y vitroexplantes hipocotiledonares y radiculares de Moringa
oleífera”. Tesis de grado. Departamento de ciencia y producción agropecuaria Ing. Agronómica. Universidad Zamorano. Honduras.
T. Murashige &F.Skoog, (1962) “A revised medium for rapid growht and bioassays with tobacco tissue cultures”.Physologia Plantarum. 15:473-497
P. Freire (2013) “Establecimiento de suspensiones celulares de Chenopodium ambrosioides para una futura obtención de metabolitos secundarios, empleando la citoquinina thidiazuron (TDZ)”. Tesis Ing.en Biotecnología. Universidad de las Fuerzas Armadas. ESPE. Sangolquí, Ecuador.
S. Bhojwani& M. Razdan (1996) “Plant tissue culture: Theory and Practice”, a Revised Edition.
Amsterdam. Elsevier. 467.
CESVBC (2014) “Manual técnico de desinfección poscosecha”. Obtenido de: http://www.lenntech.es/procesos/desinfeccion/quimica/desinfectantes-hipoclorito-de-sodio.htm.
F. Dolberg (2006) PROQUIMSA S.A. Obtenido de Hoja de Seguridad de Materiales:
http://www.proquimsaec.com/images/hoja_seguridad/HS_33_HIPOCLORITO_DE_SODIO.pdf.
W. Roca& L. Mroginski (1993) “Cultivo de Tejidos en la Agricultura: Fundamentos y aplicaciones”. (W. M. Roca, Ed.) Cali, Colombia: Centro Internacional de Agricultura Tropical. 969.
F. Bronsema, P Redig, H. Van Oosteven, & A Van Onckelen (1996) “Uptake and biochemical analysis of 2, 4-D in culturcd cigotic embryos of. Zea mays L”. Plant Physiol. (149), 3. 363-371.
A. Lorente (2012) “Evaluación del cultivo in vitro de variedades de vid cultivadas en la DOCA Rioja”. Proyecto Fin de Carrera. Universidad de la Rioja. España.
A. Zebarjadi, S. Najafi, H. Ghasempour, &D. Motamedi (2011) “Establishment of a practical tissue
culture for producing hairy roots of Valeriana officinalis L. vía Agrobacterium rhizogenes”. Journal of Medicinal Plants Research, 5(20), 4985-4990.
J. Mathur, Singh, & P.Ahuja (1991) “Plant regeneration from callus cultures of Valeriana Wallichii
DC”. Plant Cell Rep., 9. (9), 523-526.
A. Esquivel, &J. Escalant (1994) “Conceptos Básicos Del Cultivo de Tejidos Vegetales”. Turibalba, Costa Rica: OrtonIICA / CATI.
J. Pérez (2010) “Evaluación de la producción de fotoquímicos a partir de cultivo de células en la
suspensión de Neriumoleander”. Tesis de Maestría. Universidad Nacional de Colombia. Medellín. Colombia.
R. Mustafa, W. Winter, F. Van Iren, & R. Verpoorte (2011) “Initiation, growth and cryopreservation of plant cell suspension cultures”. Nature Protocols, 6. 715-720.
M. Villalobos & E.García (2012) “Características marcadoras en suspensiones celulares embriogénicas de banano cien BTA-03(AAAA) y su parental Williams (AAA)”. Bioagro. 24(2), 73-82.
G. Trejo & M. Rodríguez (2007) “La agregación celular en la producción de metabolitos secundarios en cultivos vegetales in vitro”. Interciencia. 32(10), 671-675.
A. Hulst, T. Meyer, H. Breteler, J. Tramper (1981) “Effect of aggregate size in cell cultures of Tagetespatula on thiophene production and cell growth”. Appl. Microbiol. Biotechnol.30, (1). 18-25.
J. Schlatmann, J. Vinke, H. Hoopen, J. Heijnen (1995) “Relation between dissolved oxygen
concentration and amalicine production rate in high density cultures of Catharanthus roseus”.Biotechnol. Bioeng, 45(5), 435-439.
G. Montiel, C. Breton, M. Thiersault, V. Burlat, C. Jay-Allemand, P. Gantet (2007) “Transcription factor Agamous-like 12 from Arabidopsis promotes tissue-like organization and alkaloid biosynthesis in Catharanthus roseus suspension cells”. Metab.Eng. 9. (2). 125-132.