REPRESENTATIVIDAD DE LA DIVERSIDAD DEL GÉNERO Musa EN EL ECUADOR
Barra lateral del artículo
Contenido principal del artículo
Resumen
Este estudio permitió identificar vacíos en la colección del género Musa, de la Estación Experimental Central de la Amazonía del Instituto Nacional de Investigaciones Agropecuarias, (INIAP). Esto fue posible mediante el uso de las herramientas CAPFITOGEN, permitiendo identificar 24 categorías ecogeográficas, de las cuales las categorías 10 y 9 fueron las más frecuentes con 70.501 y 44.709 celdas, respectivamente. Estas categorías presentaron características ecogeográficas muy similares con temperaturas anuales promedio de 20,9°C; precipitación del mes más húmedo de 276 mm; elevación promedio de 1051 msnm; pendiente de 3,8 grados y pH ácido (4,5-5,5). En lo relacionado a la ocurrencia, se observa vacíos geográficos en 20 de las 24 categorías. Es así que mediante la herramienta REPRESENTA de CAPFITOGEN se debe realizar colectas suplementarias a lo largo de las estribaciones orientales y occidentales, principalmente de las provincias de Bolívar, Cotopaxi, amplias zonas de Los Ríos y reductos de las provincias de Loja, Guayas, Manabí, Santa Elena, Santo Domingo de los Tsáchilas y Esmeraldas. Las herramientas CAPFITOGEN son de gran utilidad para mejorar la representatividad de las colecciones que se conservan en el banco de germoplasma del INIAP.
Descargas
Detalles del artículo
Citas
P. E. Phillips, M. M. Jahnke (2016) “Embryo Transfer (Techniques, Donors, and Recipients)”, Vet. Clin. North Am.: Large Anim. Pract. 32(2), 365-385.
H. W. Vivanco-Mackie (2001) En “Biotecnología de la reproducción”, (Ed.: G. A. Palma), Ediciones Instituto Nacional de Tecnología Agropecuaria, Argentina, pp. 603-636.
A. Abecia, F. Forcada Miranda (2010) “Manejo reproductivo en ganado ovino”, 1° Edición. Servet, Diseño y Comunicación, S.L., España, pp. 177-180.
L. Simonetti, F. Forcada, O.E Rivera, N. Carou, R.H. Alberio, J.A. Abecia, I. Palacin (2008) “Simplified superovulatory treatments in Corriedale ewes”,Anim. Reprod. Sci. 104(2-4), 227-237.
X. Liu, Q. Dai, E. J. Hart, D. M. W. Barrett, N. C. Rawlings, R.A. Pierson, P.M. Bartlewski (2007) “Ultrasonographic characteristics of ovulatory follicles and associated endocrine changes in cyclic ewes treated with medroxyprogesterone acetate (MAP)-releasing intravaginal sponges and equine chorionic gonadotropin (eCG )”, Reprod. Domest. Anim. 42(4), 393-401.
F. Mossa, P. Duffy, S. Naitana, P. Lonergan, A. C.O. Evans (2007) “Association between numbers of ovarian follicles in the first follicle wave and superovulatory response in ewes”, Anim. Reprod. Sci. 100(3-4), 391-396.
Gobierno Autónomo Descentralizado Parroquial Rural de Angochagua (2015) “Plan de Desarrollo y Ordenamiento Territorial”, Ibarra, Ecuador, Gobierno Autónomo Descentralizado Parroquial Rural de Angochagua.
M. R. Blanco, L. Simonetti, O. E. Rivera (2003) “Embryo production and progesterone profiles in ewes superovulated with different hormonal treatments”, Small Rumin. Res. 47(3), 183-191.
H. Aski, A. Masoudi, Z. Shahneh, A. Asadzadeh, S. Dirandeh, E. Sadeghipanah (2016) “The effect of equine chorionic gonadotrophin (eCG) injection combined with prostaglandin F2 α (PGF2 α ) and gonadotrophin releasing hormone treatment on reproductive performance of Zandi ewes during non-breeding season (GnRH)”, Arch. Razi Inst. 71(4), 269-276.
F. Durán Ramírez (2013) “Inseminación y transferencia de Embriones en animales de granja”, 1° Edición. Bogotá, Colombia, Grupo Latino Editores, pp. 232-234.
O. I. Azawi, M. K. M. A. Al-Mola (2011) “A study on the effect of GnRH administration on the ovarian response and laparoscopic intrauterine insemination of Awassi ewes treated with eCG to induce superovulation”, Trop. Anim. Health Prod. 43(7), 1351-1355.
J. Sanchez, O. Mejia, A. Manzur (2014) “Programa de transferencia de tecnología en aplicación de técnicas asistidas para ovinos en el trópico” IDIA XXI. 18-22.
V. R. Fajt, D.G. Pugh (2012) En “Sheep and Goat Medicine”, (Ed.: D. G. Pugh, A. N. Baird), Elsevier, EEUU, pp. 579-595.
C. J. Morrow, G. W. Asher, D. K. Berg, H. R. Tervit, P. A. Pugh, W. H. McMillan, S. Beaumont, D. R. H. Hall, A. C. S. Bell (1994) “Embryo transfer in fallow Deer (Dama dama): Superovulation, embryo recovery and laparoscopic transfer of fresh and cryopreserved embryos”, Theriogenology 42(4), 579-590.
J. A. Abecia, F. Forcada, A. González-Bulnes (2012) “Hormonal control of reproduction in small ruminants”, Anim. Reprod. Sci. 130(3–4), 173-179.
E. G. Aisen (2004) “Reproducción ovina y caprina”, 1° Edición. Buenos Aires; Argentina, Editorial Inter-médica S.A.I.C.I., pp 146-147.
P. M. Bartlewski, P. Seaton, M. E. Franco Oliveira, R. T. Kridli, M. Murawski, T. Schwarz (2016) “Intrinsic determinants and predictors of superovulatory yields in sheep: Circulating concentrations of reproductive hormones, ovarian status, and antral follicular blood flow”, Theriogenology 86(1),130-143.
M. Bruno-Galarraga, M. Cueto, A. Gibbons, F.Pereyra-Bonnet, M. Subiabre, A. González-Bulnes (2015) “Preselection of high and low ovulatory responders in sheep multiple ovulation and embryo transfer programs”, Theriogenology 84(5), 784-790.
N. Garzón, R. Urrego, C. A. Giraldo (2007) “Algunos factores que afectan los tratamientos de superovulación en la transferencia de embriones bovinos”, Revista CES Medicina Veterinaria y Zootecnia 2(2), 68-77.
G. S. Amiridis, S. Cseh (2012) “Assisted reproductive technologies in the reproductive management of small ruminants”, Anim. Reprod. Sci.130(3-4),152-161.