PROTOCOLOS DE SUPEROVULACIÓN UTILIZANDO DIFERENTES DOSIS DE GONADOTROPINA CORIÓNICA EQUINA (eCG) EN LA PRODUCCIÓN DE EMBRIONES OVINOS”
Barra lateral del artículo
Contenido principal del artículo
Resumen
Este estudio determina el efecto de un tratamiento de superovulación y transferencia de embriones, realizado en ovejas Poll Dorset (n=16) en los meses de septiembre-octubre, en la Hacienda Zuleta y Anexas S.A. situada a una altitud de 2885 msnm. En el día 0 se colocó una esponja intravaginal Chronogest® CR durante 9 días, en el día 7 se administró en el Tratamiento I (1000 UI eCG Folligon®) y el Tratamiento II (1500 UI de eCG Folligon®), el día 9 se administró un análogo de la prostaglandina F2α (Lutalyse® 10mg) conjuntamente con el retiro de la esponja, y al momento del celo se aplicó un análogo de GnRH (Conceptal® 8µg), se realizó la inseminación artificial cervical 48 horas post retiro de esponja intravaginal. La recuperación embrionaria se realizó 6 días posteriores por laparotomía. El número de cuerpos lúteos obtenidos en el tratamiento I (5,40±3,02) tratamiento II (9,80±5,20). Se demostró que (P<0,05) sí existe una diferencia significativa en la respuesta superovulatoria entre tratamientos. El número de embriones obtenidos tratamiento I (0,63±1,41), tratamiento II (2,13±2,30) donde (P>0,05) no hubo diferencia significativa entre los tratamientos. Se concluyó que el Tratamiento II, mostró una mejor respuesta a la superovulación frente al Tratamiento I. Sin embargo, para la recolección de embriones los dos tratamientos no presentan ninguna diferencia.
Descargas
Detalles del artículo
Citas
[2] P. E. Phillips, M. M. Jahnke (2016) “Embryo Transfer (Techniques, Donors, and Recipients)”, Vet. Clin. North Am.: Large Anim. Pract. 32(2), 365-385.
[3] H. W. Vivanco-Mackie (2001) En “Biotecnología de la reproducción”, (Ed.: G. A. Palma), Ediciones Instituto Nacional de Tecnología Agropecuaria, Argentina, pp. 603-636.
[4] A. Abecia, F. Forcada Miranda (2010) “Manejo reproductivo en ganado ovino”, 1° Edición. Servet, Diseño y Comunicación, S.L., España, pp. 177-180.
[5] L. Simonetti, F. Forcada, O.E Rivera, N. Carou, R.H. Alberio, J.A. Abecia, I. Palacin (2008) “Simplified superovulatory treatments in Corriedale ewes”, Anim. Reprod. Sci. 104(2-4), 227-237.
[6] X. Liu, Q. Dai, E. J. Hart, D. M. W. Barrett, N. C. Rawlings, R.A. Pierson, P.M. Bartlewski (2007) “Ultrasonographic characteristics of ovulatory follicles and associated endocrine changes in cyclic ewes treated with medroxyprogesterone acetate (MAP)-releasing intravaginal sponges and equine chorionic gonadotropin (eCG )”, Reprod. Domest. Anim. 42(4), 393-401.
[7] F. Mossa, P. Duffy, S. Naitana, P. Lonergan, A. C. O. Evans (2007) “Association between numbers of ovarian follicles in the first follicle wave and superovulatory response in ewes”, Anim. Reprod. Sci. 100(3-4), 391-396.
[8] Gobierno Autónomo Descentralizado Parroquial Rural de Angochagua (2015) “Plan de Desarrollo y Ordenamiento Territorial”, Ibarra, Ecuador, Gobierno Autónomo Descentralizado Parroquial Rural de Angochagua.
[9] M. R. Blanco, L. Simonetti, O. E. Rivera (2003) “Embryo production and progesterone profiles in ewes superovulated with different hormonal treatments”, Small Rumin. Res. 47(3), 183-191.
[10] H. Aski, A. Masoudi, Z. Shahneh, A. Asadzadeh, S. Dirandeh, E. Sadeghipanah (2016) “The effect of equine chorionic gonadotrophin (eCG) injection combined with prostaglandin F2 α (PGF2 α ) and gonadotrophin releasing hormone treatment on reproductive performance of Zandi ewes during non-breeding season (GnRH)”, Arch. Razi Inst. 71(4), 269-276.
[11] F. Durán Ramírez (2013) “Inseminación y transferencia de Embriones en animales de granja”, 1° Edición. Bogotá, Colombia, Grupo Latino Editores, pp. 232-234.
[12] O. I. Azawi, M. K. M. A. Al-Mola (2011) “A study on the effect of GnRH administration on the ovarian response and laparoscopic intrauterine insemination of Awassi ewes treated with eCG to induce superovulation”, Trop. Anim. Health Prod. 43(7), 1351-1355.
[13] J. Sanchez, O. Mejia, A. Manzur (2014) “Programa de transferencia de tecnología en aplicación de técnicas asistidas para ovinos en el trópico” IDIA XXI. 18-22.
[14] V. R. Fajt, D.G. Pugh (2012) En “Sheep and Goat Medicine”, (Ed.: D. G. Pugh, A. N. Baird), Elsevier, EEUU, pp. 579-595.
[15] C. J. Morrow, G. W. Asher, D. K. Berg, H. R. Tervit, P. A. Pugh, W. H. McMillan, S. Beaumont, D. R. H. Hall, A. C. S. Bell (1994) “Embryo transfer in fallow Deer (Dama dama): Superovulation, embryo recovery and laparoscopic transfer of fresh and cryopreserved embryos”, Theriogenology 42(4), 579-590.
[16] J. A. Abecia, F. Forcada, A. González-Bulnes (2012) “Hormonal control of reproduction in small ruminants”, Anim. Reprod. Sci. 130(3–4), 173-179.[17] E. G. Aisen (2004) “Reproducción ovina y caprina”, 1° Edición. Buenos Aires; Argentina, Editorial Inter-médica S.A.I.C.I., pp 146-147.
[18] P. M. Bartlewski, P. Seaton, M. E. Franco Oliveira, R. T. Kridli, M. Murawski, T. Schwarz (2016) “Intrinsic determinants and predictors of superovulatory yields in sheep: Circulating concentrations of reproductive hormones, ovarian status, and antral follicular blood flow”, Theriogenology 86(1),130-143.
[19] M. Bruno-Galarraga, M. Cueto, A. Gibbons, F. Pereyra-Bonnet, M. Subiabre, A. González-Bulnes (2015) “Preselection of high and low ovulatory responders in sheep multiple ovulation and embryo transfer programs”, Theriogenology 84(5), 784-790.
[20] N. Garzón, R. Urrego, C. A. Giraldo (2007) “Algunos factores que afectan los tratamientos de superovulación en la transferencia de embriones bovinos”, Revista CES Medicina Veterinaria y Zootecnia 2(2), 68-77.
[21] G. S. Amir